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人牙周膜成纖維細胞

型 號

產品時間2025-11-05

所屬分類人原代細胞

報價2600

產品描述:人牙周膜成纖維細胞公司正在出售的產品:組織單胺氧化酶A型(MAO-A)活性化學發光法定量檢測試劑盒
體液單胺氧化酶A型(MAO-A)活性化學發光法定量檢測試劑盒
細胞單胺氧化酶B型(MAO-B)活性化學發光法定量檢測試劑盒
組織單胺氧化酶B型(MAO-B)活性化學發光法定量檢測試劑盒
體液單胺氧化酶B型(MAO-B)活性化學發光法定量檢測試劑盒

產品概述

人牙周膜成纖維細胞

細胞基本屬性:

產品名稱

人牙周膜成纖維細胞

組織來源

正常牙組織

種屬

生長特性

貼壁生長

形態特征

成纖維細胞樣

英文名稱

Periodontal   Ligament Fibroblasts Cells

貨號

EY-XY3257

規格

5x105cells/T251mL凍存管

質量檢測:纖維連接蛋白(Fibronectin)或波形蛋白(Vimentin)免疫熒光染色為陽性,純度高于 90%,且不含有HIV-1HBVHCV、支原體、細菌、酵母和真菌等

產品規格:5x105cells/T251mL凍存管

培養基:人牙周膜成纖維細胞專用培養基

培養條件:氣相:95%空氣+5%二氧化碳;溫度:37

換液頻率:每2-3天換液一次

消化液:0.25%

 產品貨期現貨,1周左右

運輸方式T25培養瓶/ 順豐快遞(包郵)

供應限制僅限于科學研究,絕不可作為動物或人類疾病的治療產品使用

背景介紹:

牙周膜由致密結締組織所構成,牙周膜內有神經、血管、淋巴和上皮細胞。牙周膜成纖維細胞是牙周膜中最主要的細胞,其功能是參與膠原蛋白的合成與吸收,使牙周膜中的膠原能不斷更新;還與基質形成有關。作為牙周膜的主體細胞,參與了牙周組織的病變、修復及再生過程






原代細胞的分離培養:

原代培養即直接從有機體取下細胞、組織或器官,讓它們在體外維持與生長。原代培養的特點是細胞或組織剛離開機體,它們的生物性狀尚未發生很大的改變,在一定程度上可反映它們在體內的狀態,表現出來源組織或細胞的特性, 因此用于藥物實驗,尤其是藥物對細胞活動、結構、代謝、有無毒性或殺傷作用等,是的工具。常用的原代培養法有組織塊培養法和消化培養法。

(一)組織塊培養法

許多實驗室喜歡用組織塊培養法進行原代培養,因為方法簡單,細胞也較容易生長。尤其是培養心肌,有時還可觀察到心肌組織塊搏動。細胞從組織塊邊緣向外長出并鋪滿培養皿或培養瓶后, 即可進行傳代。

1. 設備材料

培養箱、冰箱、超凈工作臺/無菌間、無菌吸管、離心管、酒精燈、試管架、培養瓶、培養皿、消化液、基礎培養液、胎牛血清、Hanks 溶液、雙抗試液、剪刀、攝子、小燒杯。

2. 操作步驟

(1) 在無菌條件下,取待培養的組織適量,置入小燒杯中, 以適量Hanks 溶液清洗2~3 次,去掉組織塊表面的血污。

(2)用眼科剪將組織塊反復剪成0.5~ 1mm3的小塊。

(3)再用Hanks 溶液反復漂洗, 直至液體不混濁為止。等組織塊下沉,將燒杯傾斜,用小吸管盡量吸除Hanks 溶液。

(4)用含20%滅活血清及雙抗溶液(200U/ml、200μg/ml)的培養液再清洗,用吸管吸干后加入5ml 含20%血清的培養液。

(5)用彎頭吸管吸取組織小塊,均勻地置于培養皿內表面,吸去多余的培養液,各組織小塊之間相距0.5cm 為宜。蓋好培養皿蓋,做好標記, 置37°C 的CO2培養箱內。

(6) 2~4h 后,于超凈工作臺中,緩緩地向培養皿中加入上述含20%血清及雙抗溶液( 100U/ml 及100μg/ml )的培養液少量,以使組織塊浸沒在培養液中。

(7)輕輕地將培養皿及組織塊移至CO2 培養箱, 如無特殊情況,不必觀察。1~2 周后,可觀察到細胞從組織塊邊緣長出,形成生長暈。

(9) 一般說來,若培養液無明顯改變, 1 周換液1 次即可。待細胞長滿整個培養皿內表面,即可進行傳代培養。

QQ截圖20240105153042.png

操作方法:

組織塊直接培養法(原代細胞培養實驗)

材料與儀器

【動物】選擇大約一半足孕時間的胚胎,10-13天齡胚胎含有最大數量的未分化的間質細胞,成纖維細胞可從這些細胞衍生獲得。每組小鼠胚胎1個【實驗材料】每組的超凈臺中有以下物品:1.50ml配制好的RPMI1640培養液1瓶;8ml小牛血清(FCS)1瓶;100ml 0.25%瓶;PBS(-)1瓶2.100ml滅菌燒杯2個;3、50ml離心筒2個4、滅菌培養皿1個,細胞培養瓶1個5、1ml,200μl移液器各1支;槍頭盒2個;無菌玻璃攪拌棒1個6、細胞計數板1塊;7、滅好菌的鑷子1把,剪刀1把;8、酒精燈1臺;

步驟

1) 胚胎的分離。適用哺乳動物(倉鼠、小鼠和大鼠)2)將1-2個胚胎轉移至一個小的無菌培養皿中,用新的無菌剪刀小心地絞碎胚胎,用PBS漂洗。3)在無菌狀態下,將絞碎的胚胎轉移于一50ml的無菌離心筒中,加入40ml 0.25%的無菌,用攪拌棒輕輕攪動。4)在溫暖的環境中或置于37°C培養箱中輕輕搖動15分鐘。5)讓存留的組織塊在重力作用下慢慢沉降,將含有懸浮細胞的液體轉移至一無菌50ml的離心管中,該管內按照每10ml上清加入l ml小牛血清的比例加入牛血清以滅活,。6)加人新鮮溶液(見前述步驟)于含有殘留未消化組織塊的原來的50ml離心筒中,重復步驟4和5。7)離心混合的細胞懸液,1200r/rain,5分鐘,棄上清。8)用新鮮的無菌PBS重懸沉淀的細胞,按步驟7再次離心。9)用PBS反復洗滌細胞直至上清清亮為止。

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